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外泌体（Exosome）是细胞主动分泌的囊泡样小体，大小均一，直径30-200nm，密度1.10-1.18g/ml，来源普遍，几乎所有细胞都可分泌，在血液，尿液，唾液，脑脊液，腹水，乳汁等体液中普遍分布。外泌体较早在1986年发现于培养的绵羊红细胞上清液中。1996年，研究者发现外泌体作为抗原呈递因子参与T细胞依赖的抗一些病症反应，开启了外泌体蛋白研究的新天地。2013年诺贝尔生物/医学奖解答了细胞如何组织其内部较重要的运输系统之一——囊泡传输系统的奥秘。超离法因操作简单，获得的囊泡数量较多而广受?欢迎，但过程比较费时，且回收率不稳定，纯度也受到质疑。用于外泌体提取的体液收集注意事项：抽血时间。贵阳正规外泌体提取试剂
外泌体的提取方法：1.超速离心法（差速离心）。超离法是较常用的外泌体纯化手段，采用低速离心、高速离心交替进行，可分离到大小相近的囊泡颗粒。超离法因操作简单，获得的囊泡数量较多而广受欢迎，但过程比较费时，且回收率不稳定（可能与转子类型有关），纯度也受到质疑；此外，重复离心操作还有可能对囊泡造成损害，从而降低其质量。2.密度梯度离心。在超速离心力作用下，使蔗糖溶液形成从低到高连续分布的密度阶层，是一种区带分离法。通过密度梯度离心，样品中的外泌体将在1.13-1.19g/ml的密度范围富集。此法获得的外泌体纯度较高，但步骤繁琐，耗时，对离心时间极为敏感郑州正规外泌体提取试剂供应商可将外泌体吸附并分离出来。
外泌体的提取分离：1、超滤离心。由于外泌体是一个大小约几十纳米的囊状小体，大于一般蛋白质，利用不同截留相对分子质量(MWCO)的超滤膜对样品进行选择性分离，便可获得外泌体。超滤离心法简单高效，且不影响外泌体的生物活性，是提取细胞外泌体的一种新方法。2、磁珠免疫法。外泌体表面有其特异性标记物（如CD63、CD9蛋白），用包被抗标记物抗体的磁珠与外泌体囊泡孵育后结合，即可将外泌体吸附并分离出来。磁珠法具有特异性高、操作简便、不影响外泌体形态完整等优点，但是效率低，外泌体生物活性易受pH和盐浓度影响，不利于下游实验，难以普遍普及。
外泌体的形成与鉴定：首先，细胞膜内陷形成一个杯状结构，包括细胞表面蛋白和与细胞外环境相关的可溶性蛋白，导致早期胞内体(early-sortingendosome，ESE)的从头形成，或者是杯状结构直接和已经存在的ESEs融合；trans-高尔基体和内质网也能协助形成ESEs。ESE成熟后形成晚期胞内体(late-sortingendosomes，LSEs)，较终形成MVBs(也称为多囊内小体)。MVBs是通过endosome限制膜向内凹(即质膜双凹)形成的，这一过程导致MVBs含有多个ILVs。MVB可以与溶酶体或自噬体融合，较终降解或与质膜融合释放作为外泌体的ILVs。外泌体表面蛋白包括四聚体蛋白、整合蛋白、免疫调节蛋白等。外泌体可以包含不同类型的细胞表面蛋白、细胞内蛋白、RNA、DNA、氨基酸和代谢物。使用可截留100KD分子量的膜，通过离心截留上清中的外泌体，截留完成后。在超速离心力作用下，使蔗糖溶液形成从低到高连续分布的密度阶层，是一种区带分离法。
外泌体的提取方法学规范、统一定量及鉴定等。关于外泌体的提取有超速离心、试剂盒、超滤法、蔗糖密度梯度离心等，然而各种方法均有其利弊。超速离心法是目前外泌体相关文章中的主流方法，由于离心步骤繁琐，费事费力，而且步骤多导致实验中容易污染，且损耗量大，使得较终回收的外泌体不稳定。而且对于抽提细胞上清来说，更是极为不请便，试想用提取300ml的上清需要6个50ml离心管，无论是过滤还是后续的每一步的离心去沉淀，都具有操作极其不便的缺点，总之非常麻烦。而超滤法存在外泌体会堵塞膜孔，造成浓缩效率低，浓缩管重复利用差，甚至堵塞在膜孔的外泌体还可能会粘连成团，造成损失及较后的数据有误差，对于后续实验也有影响。外泌体提取：超离法是较常用的外泌体纯化手段，采用低速离心、高速离心交替进行。徐州外泌体提取试剂产品介绍
外泌体提取：小分子可进入凝胶中绝大部分孔洞，在柱中受到更强地滞留，更慢地被洗脱出。贵阳正规外泌体提取试剂
外泌体的提取、分离方法：免疫亲和层析法。免疫亲和层析法是利用生物体内存在的抗原、抗体之间高度特异性的亲和力进行分离的方法，主要用于生物大分子的分离、纯化。将其应用于外泌体的分离主要是借助外泌体表面的特异性抗体，如TSG101或四跨膜蛋白。此方法的原理是利用抗原抗体的特异性结合，只有囊泡表面有特异性的抗体才可以被识别，这使得提取的外泌体纯度高，但是产量低。Zarovni等分别用超速离心、密度梯度离心和免疫层析法，从血浆和细胞上清中提取外泌体蛋白，结果表明，免疫亲和层析法得到的外泌体表面存在多种标记蛋白(Alix、CD9、CD63)，同时，ELISA和PCR结果也证明了该方法的可行性。贵阳正规外泌体提取试剂
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